产品说明 本试剂盒用于大肠杆菌中质粒DNA的小量提取。它结合了优化的碱裂解法,以及方便快捷的硅膜离心技术,具有高效,快捷的特点,能在30分钟内完成全部操作。利用本试剂盒能从1~5ml过夜培养的大肠杆菌菌液中纯化得到10-40μg高质量的质粒DNA(OD260/OD280=1.7~1.9),此质粒DNA可直接用于DNA序列分析,各种酶促反应,PCR以及部分细胞系的转染等。
产品组成(50次包装)
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RNaseA (10mg/ml) |
130μl |
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Resuspension Buffer |
15ml |
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Lysis Buffer |
15ml |
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Neutralization Buffer |
25ml |
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Column Preparation Buffer |
30ml |
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Protein Remove Buffer |
30ml |
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Wash Buffer |
15ml |
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Elution Buffer |
5ml |
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Spin Column |
50个 |
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Collection Tube(2ml) |
50个 |
贮存温度 室温保存(RNaseA使用前-20℃保存) 试剂准备 1、Resuspension Buffer 使用前将RNase A全部加入(使用前请离心),均匀混合后4℃保存并标示。 2、Wash Buffer 使用前请加入45ml无水乙醇并标示。 3、使用前检查各试剂是否有沉淀,若有请于37℃溶解,再恢复至室温后使用。 4、Lysis Buffer用后盖紧瓶盖。
操作步骤 1、收菌 取1~5ml过夜培养的大肠杆菌菌液,13000rpm离心1分钟,弃上清。 注意:一般高拷贝质粒用1-3ml菌液,低拷贝质粒用2-10ml菌液。若使用大体积菌液,请相应加大各溶液的体积。 2、重悬菌液 将250μl Resuspension Buffer(已加RNase A)加入菌液沉淀,Vortex充分悬浮细菌沉淀。 注意:请充分重悬细菌,若不充分会导致碱裂解不完全。
3、碱裂解 将250μl Lysis Buffer 加入细菌重悬液,温和地上下翻转混合6~10次,使菌体充分裂解,直至溶液变得清亮。 注意:此步请轻柔混合,剧烈混合如Vortex会导致基因组DNA断裂,从而污染质粒DNA。 碱裂解不宜超过5分钟,否则会导致部分质粒DNA不可逆变性。 4、中和 加入400μl Neutralization Buffer,立即轻柔地上下翻转混合6~10次,室温放置5分钟。室温13000rpm离心10分钟。 5、柱预处理 将试剂盒中的Spin Column 按置于Collection Tube上,加入500μl Column Preparation Buffer, 13000rpm离心1分钟,弃去滤出液。 注意:此步处理会优化柱结合DNA能力。 6、柱结合 将上述操作4的上清液转移至预处理过的Spin Column中,13000rpm离心1分钟,弃滤液。 7、去蛋白 将500μl的Protein Remove Buffer加入Spin Column中,13000rpm离心30-60秒,弃滤液。 8、漂洗 将600μl的Wash Buffer加入Spin Column中,13000rpm离心30-60秒,弃滤液。 9、重复漂洗一次,13000rpm离心30-60秒,弃滤液。 空柱13000rpm再离心2分钟,除去残留乙醇。 10、洗脱 将Spin Column按置于新的洁净的1.5ml的离心管上,在Spin Column膜的中央处加入60-100μl的水或Elution Buffer,室温静置1分钟,13000rpm离心1分钟洗脱DNA,可立即用于下游分子生物学实验或-20℃保存。 注意:Elution Buffer 组成为2.5mM Tris-HCI (pH8.5),不影响测序和酶切反应。把水或洗脱液加热于60℃使用时有利于提高洗脱液效率,如果提取的质粒>10kb,请将洗脱液预热至60℃。
质量控制 所提取质粒DNA经紫外分光光度分析以及琼脂糖凝胶电泳鉴定质量:3ml过夜培养的大肠杆菌(含pEYFP-c1质粒)按照标准方法抽提质粒,100μl洗脱,取1μl电泳,所得质粒浓度分别为275μg/ml和290μg/ml,OD260/280为1.886和1.895。
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| 规 格 |
单 价 |
| 50次 |
350元 |
| 100次 |
580元 | |

产品仅用于科研。请勿用于人及动物的治疗,临床诊断,或作为食品,化妆品,家庭用品的添加剂等用途。
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